近年来,随着对阴茎勃起功能障碍分子生物学机制的不断深入研究,勃起功能障碍的基因治疗成为可能;目前已有一定的实验室结果,有望在不久将来能够应用于临床。
    (一)勃起功能障碍的基因治疗的目的靶基因　目前可作为治疗的靶基因有以下几种:pde5、pde3a、inos、ang、α1receptorsubtypes、oxide2sen2sitiveguanylylcyclasesubunits、(igf)2i、ngf、tgf(tgf2β1,tgf2β2,tgf2β3)、vegf、hslocdna2humansmoothmusclemaxi2k+channel、cox22、pgf2α、ho等。    最有治疗价值的基因是那些在阴茎勃起中发挥主要作用的基因。勃起功能障碍通常被认为是阴茎神经末梢或内皮细胞no合成下降所致,或是受no诱导发生松弛反应的海绵体平滑肌顺应性受损的结果。如果能够通过基因治疗使nos的作用加强,增加体内的no,即可达到治疗目的。因此nos基因可作为勃起功能障碍治疗的目的基因。no中nnos活性与几种类型的勃起功能障碍有关,可作为一个十分有用的目的基因。由于inos的器官特异性,inos基因也是勃起功能障碍基因治疗的理想目的基因。   血管性勃起功能障碍与血管内皮生长因子及tgf等密切相关,因此以它们为靶基因的转基因治疗亦取得了一定的效果。   大量临床资料表明,pde5抑制剂可有效治疗勃起功能障碍,有关pde5的转基因治疗方面的研究尚未见报道。
    另外,k+通道,血管紧张素转化酶基因(ace)插入/缺失(id)的多态性等遗传学因素也与勃起功能障碍的发病有关,也可选择作为目的基因。用于勃起功能障碍基因治疗的载体,包括质粒dna载体和病毒载体等。 

  (二)勃起功能障碍基因治疗的实验研究　许多学者已经开始进行勃起功能障碍基因治疗的动物实验研究。champion等[21]为探讨enos是否能够提高阴茎的勃起功能,构建了enos的腺病毒载体adcmvenos,并直接注射到老年鼠阴茎海绵体中。转基因后1天,经western印迹检测发现enos蛋白表达增加,而且cgmp的浓度提高。对阴茎海绵体神经刺激时,转基因鼠阴茎海绵体内压增加,勃起反应敏感度提高。garban等(1977)用两种方法对年龄相关的大鼠勃起功能障碍模型进行基因治疗,一种方法是在基因水平诱导生成内源性inos。他们在老年大鼠(20月龄)和高龄大鼠(30月龄)皮包埋渗透性泵,泵内含有inos诱导剂,包括lps,鼠类inf,人类tnfα及人类il21β,泵以导管与阴茎海绵体相连。以成年大鼠(5月龄)或未治疗的大鼠(20月龄或30月龄)作为对照。治疗3～6天后,测量电刺激(efs)海绵体神经诱发的勃起反应,同对照组相比,老年大鼠和高龄大鼠勃起障碍改善,且western印迹法,nadph硫辛酰胺脱氢酶及nos活性测定法均表明这些大鼠阴茎中有inos诱导生成。另一方法是从大鼠阴茎平滑肌细胞(rpsmc诱生的inosmrna克隆出inoscdna,然后以脂质体作载体,将此cdna注射到实验组大鼠阴茎海绵体中,用外源性补充inoscdna进行基因治疗。治疗10天后,电刺激反应表明大鼠年龄相关的勃起功能障碍得到改善。pcr可检测出阴茎中有inos基因存在,rt2pcr及westem印迹法也可检测出i2noscdna的表达产物。同第一种方法比较,后一种操作简单,电刺激诱导的勃起反应持续时间长,效果好,而毒副反应少。
      christ等(1996)将一种特殊亚型的k+通道基因———人类平滑肌maxi2k+通道(hslo)的裸dna注射入大鼠阴茎海绵体,用电刺激诱导阴茎勃起时的海绵体内压作为判断海绵体生理学改变的客观指标,同仅注射载体的以年龄配比的对照组相比,注射hslocdna的所有大鼠海绵体内压均非常显著增加,注射1～3个月后,该效果仍明显存在。此基因治疗机制可能是通过表达外源性人类k+通道基因,加强了海绵体平滑肌细胞超极化,降低平滑肌的兴奋性。这种超极化可使l2型电压依赖性ca2+通道的跨膜转运被抑制。最终导致细胞内钙浓度下降,使平滑肌松弛而诱发勃起。